Đánh giá nhiễm trùng trước khi ghép tạng đặc

Ghép tạng đặc là liệu pháp được lựa chọn cho nhiều loại suy tạng khác nhau. Hai biến chứng chính, nhiễm trùng và ác tính, là kết quả của việc ức chế miễn dịch suốt đời cần thiết để duy trì chức năng ghép tạng.

Đánh giá tiền ghép xác định các nguy cơ nhiễm trùng sau ghép và xác định các chiến lược phòng ngừa cá nhân hóa bao gồm điều trị các nhiễm trùng hiện có, dự phòng và tiêm chủng. Do đó, việc đánh giá tập trung vào lịch sử tiếp xúc, nhiễm trùng trước đó, xét nghiệm huyết thanh học đối với các phơi nhiễm xa, nuôi cấy để xác định mô hình xâm chiếm và tiêm vắc-xin 1. Sàng lọc tương tự đối với ghép từ người hiến sống (thận và gan) so với đánh giá từ người hiến đã qua đời. Ở người nhận, các nhiễm trùng đang hoạt động được đánh giá gần thời điểm ghép bao gồm HIV, viêm gan B và C, và nhiễm trùng hô hấp hoặc ổ bụng xen kẽ vì chúng có thể trở nặng do ức chế miễn dịch sau ghép. Trong tình trạng bệnh nặng, đặc biệt là suy gan hoặc suy tim, các nguy cơ phẫu thuật và ức chế miễn dịch phải được cân bằng với việc thay thế tạng cứu mạng. Trong những trường hợp như vậy, việc đánh giá khẩn cấp bởi các bác sĩ lâm sàng giàu kinh nghiệm và liệu pháp kháng sinh thực nghiệm thường được chỉ định. Đánh giá tiền ghép cũng là cơ hội để cung cấp kiến thức về các nguy cơ nhiễm trùng trong thời kỳ sau ghép.

Các thành phần của đánh giá tiền ghép sẽ được xem xét tại đây. Các nhiễm trùng sau ghép tạng đặc được thảo luận trong các chủ đề sau:

Các sinh vật thường liên quan đến nhiễm trùng sau ghép tạng là kết quả của sự tái hoạt động của nhiễm trùng tiềm ẩn do cơ quan hiến tặng hoặc người nhận mang; tiếp xúc mới trong cộng đồng hoặc bệnh viện; hoặc do phẫu thuật 1-4. Nhiễm trùng tiềm ẩn đề cập đến các sinh vật có mặt ở người nhận dự kiến hoặc trong mô hiến tặng mà không được nhận diện là gây bệnh. Cytomegalovirus, virus Epstein-Barr, Toxoplasma gondii, Strongyloides stercoralis, và Trypanosoma cruzi là các ví dụ về các sinh vật có thể tồn tại ở vật chủ bình thường và nhìn chung được kiểm soát bởi hệ thống miễn dịch. Nguy cơ tái hoạt động (nhân bản) của các nhiễm trùng tiềm ẩn này liên quan đến bản chất và mức độ ức chế miễn dịch sau khi ghép tạng 5.

Nhiễm trùng đã thiết lập khó điều trị hơn ở người nhận ghép tạng bị suy giảm miễn dịch. Các độc tính kháng sinh và tương tác thuốc đáng kể là phổ biến, thường là do chức năng thận hoặc gan suy giảm. Do đó, đánh giá nhiễm trùng trước khi ghép tạng là trọng tâm của việc chăm sóc và nên toàn diện. Các mục tiêu đánh giá bao gồm:

Các sinh vật định cư là các mầm bệnh tiềm năng trong tình trạng suy giảm miễn dịch hoặc cấp tính trong môi trường sau phẫu thuật nếu được thu nhận từ môi trường qua các ống thông tiếp cận mạch máu, ống nội khí quản, rò nối, chảy máu và các ổ dịch, hoặc vết thương phẫu thuật hở 6-9. Nhiễm trùng, khi xảy ra, có thể biểu hiện rất lâu sau khi ghép tạng. Các sinh vật định cư có thể bao gồm các sinh vật kháng kháng sinh như Pseudomonas aeruginosa, các loài Aspergillus, Stenotrophomonas maltophilia, Burkholderia cepacia, Staphylococcus aureus kháng methicillin, và enterococci kháng vancomycin. Sự định cư với các mầm bệnh kháng thuốc như vậy là phổ biến khi:

Các MDROs bao gồm Klebsiella pneumoniae kháng carbapenem và các bacillus gram âm khác ngày càng phổ biến ở người nhận ghép tạng đặc 3,7,9-11. Việc xác định các mầm bệnh tiềm năng này trước khi ghép tạng cho phép phòng ngừa quanh phẫu thuật và/hoặc điều trị kháng sinh thích hợp nếu bị nhiễm trùng. Hiện chưa có sự đồng thuận nào về các phương pháp tối ưu để sàng lọc MDROs trước khi ghép tạng. Điều trị kháng sinh nên dựa trên dữ liệu độ nhạy trong ống nghiệm và đi kèm với việc làm sạch các ổ nhiễm trùng, chẳng hạn như máu tụ nhiễm trùng hoặc các ổ dịch khác.

Đánh giá lâm sàng của bệnh nhân trước khi ghép tạng đặc nên tập trung vào tiền sử phơi nhiễm, tiền sử nhiễm trùng trước đó, nuôi cấy để tìm sự định cư, huyết thanh học cho các phơi nhiễm xa hơn, và việc tiêm chủng vắc-xin 1.

Việc có một tiền sử đầy đủ về các liệu pháp ức chế miễn dịch trước đó là rất cần thiết. Việc sử dụng các liệu pháp ức chế miễn dịch trong giai đoạn tiền ghép có thể làm tăng nguy cơ viêm phổi Pneumocystis jirovecii, tái hoạt động lao, vi rút viêm gan B, histoplasmosis, cryptococcosis, hoặc toxoplasmosis trong giai đoạn sau ghép sớm. Ngoài ra, tiền sử các phác đồ ức chế miễn dịch gần đây như glucocorticoid đối với lupus ban đỏ hệ thống hoặc bệnh phổi tắc nghẽn mạn tính, suy giảm tế bào T hoặc tế bào B và các chất điều biến miễn dịch (“sinh học”) đối với bệnh lý khớp hoặc bệnh viêm ruột, hoặc điều trị trước đây cho khối u ác tính có thể làm thay đổi lựa chọn và cường độ của cả phác đồ dự phòng và ức chế miễn dịch sau khi ghép.

Cần thực hiện xem xét kỹ lưỡng các hệ thống để phát hiện các nhiễm trùng tiềm ẩn hoặc sự định cư hiện tại. Tất cả các nhiễm trùng trước đó phải được ghi lại, bao gồm cả kiểu hình nhạy cảm kháng sinh của các sinh vật đã được phân lập trước đó và bất kỳ phương pháp điều trị nào đã nhận được. Trong một số trường hợp, các ứng viên ghép có nhiễm trùng tái phát như viêm túi mật, viêm xoang, viêm túi thừa và viêm bể thận có thể cần phải giải quyết các tình trạng này trước khi ghép.

Xét nghiệm huyết thanh học được sử dụng làm chỉ số nhiễm trùng trước đó. Các xét nghiệm dựa trên kháng thể (xét nghiệm huyết thanh) nhìn chung không nên được sử dụng để chẩn đoán nhiễm trùng đang hoạt động vì có thể có độ trễ giữa phơi nhiễm mầm bệnh và chuyển đổi huyết thanh (“giai đoạn cửa sổ”). Ngoài ra, có thể xảy ra phản ứng chéo huyết thanh học (ví dụ, giữa nấm đặc hữu) và phải được diễn giải một cách thận trọng. Các xét nghiệm khuếch đại axit nucleic được sử dụng để phát hiện và đo lường nhiễm trùng đang hoạt động ở người hiến hoặc người nhận tạng và thường sẽ dương tính sớm hơn so với các xét nghiệm huyết thanh học.

Xét nghiệm huyết thanh sàng lọc vi-rút cytomegalovirus, vi-rút herpes simplex, T. gondii, H. capsulatum, Coccidioides spp, và T. cruzi (bệnh Chagas) trong bối cảnh lịch sử phơi nhiễm thích hợp được sử dụng làm hướng dẫn cho các chiến lược dự phòng sau khi ghép tạng thay vì cho các liệu pháp tiền ghép tạng. Các xét nghiệm khác chỉ ra các loại vắc-xin cần thiết bao gồm vi-rút viêm gan B, vắc-xin zoster tái tổ hợp, sởi, quai bị và rubella, bạch hầu, ho gà và uốn ván. Xét nghiệm huyết thanh virus Epstein-Barr hữu ích trong việc phân tầng nguy cơ rối loạn tăng sinh lympho sau ghép tạng, đặc biệt ở người nhận ghép tạng nhi và những người mà belatacept nên được tránh 18. (Xem “Biểu hiện lâm sàng, chẩn đoán và quản lý bệnh cytomegalovirus ở bệnh nhân ghép thận” và “Điều trị và phòng ngừa rối loạn tăng sinh lympho sau ghép tạng”.)

Histoplasma, Blastomyces, và Coccidioides huyết thanh không nhạy trong việc phát hiện nhiễm trùng tiềm ẩn và có thể phản ứng chéo với nhau. Do đó, kết quả huyết thanh âm tính không loại trừ nhiễm trùng tiềm ẩn với các mầm bệnh này. Nguy cơ nhiễm trùng nên được đánh giá cho từng bệnh nhân dựa trên lịch sử phơi nhiễm, báo cáo về các đợt nhiễm trùng có triệu chứng nhất quán trước đó (ví dụ: sốt thung lũng), và các phát hiện về các hạt granuloma đã lành (ví dụ: trong phổi và/hoặc hạch bạch huyết vùng rốn), cho thấy nhiễm trùng tiềm ẩn.

Xét nghiệm tải lượng vi-rút nên được thực hiện đối với HIV, vi-rút viêm gan B và vi-rút viêm gan C ở những ứng viên bị nhiễm. Phòng ngừa tiêu chuẩn trước khi ghép tạng đối với viêm gan B được khuyến nghị cho những người nhận ghép gan chưa được tiêm chủng và có nhiễm trùng đang hoạt động. Các quyết định liên quan đến thời điểm điều trị vi-rút viêm gan C nên được cá nhân hóa dựa trên mức độ hoạt động của bệnh và thời gian chờ ghép gan dự kiến. (Xem “Phòng ngừa nhiễm trùng trong ghép tạng tạng đặc” và “Ghép thận ở người lớn: Nhiễm vi-rút viêm gan B ở người nhận ghép thận” và “Tái hoạt động vi-rút viêm gan B liên quan đến liệu pháp ức chế miễn dịch” và “Đánh giá bệnh nhân và lựa chọn điều trị kháng vi-rút cho nhiễm vi-rút viêm gan C mạn tính” và “Nhiễm vi-rút viêm gan C ở ứng viên và người nhận ghép gan”.)

Cần lưu ý đặc biệt về xét nghiệm lao (Xem ‘Xét nghiệm lao tiềm ẩn’ bên dưới.)

Bệnh nhân có kết quả huyết thanh dương tính với Strongyloides nên được điều trị trước khi ghép tạng. Điều trị kinh nghiệm (có hoặc không có xét nghiệm huyết thanh) cho bệnh nhân có khả năng phơi nhiễm trước đó (ví dụ: cư trú ở khu vực đặc hữu) là một thực hành phổ biến 19. Ivermectin là phương pháp điều trị được lựa chọn.

Ở các khu vực đặc hữu và vào mùa thích hợp, người hiến và người nhận có thể được sàng lọc phơi nhiễm với vi-rút West Nile, bệnh Chagas, vi-rút Zika, hoặc các mầm bệnh độc nhất khác (bảng 1). (Xem “Lao ở ứng viên và người nhận ghép tạng tạng đặc”.)

Vi-rút lymphotropic T người (HTLV)-1 có thể gây liệt nửa người/bệnh tủy hoặc bệnh bạch cầu/lymphoma tế bào T người lớn. HTLV-2, vốn đặc hữu ở các khu vực bao gồm vùng Caribbean và một số khu vực ở châu Á và châu Phi, ít liên quan rõ ràng hơn đến các bệnh này và khó phân biệt huyết thanh với HTLV-1. Do tỷ lệ nhiễm thấp ở Hoa Kỳ và các lựa chọn xét nghiệm kém, việc sàng lọc bắt buộc HTLV-1/-2 đã bị ngừng ở Hoa Kỳ vào năm 2009 20. Hiếm khi, nhiễm HTLV-1 truyền từ người hiến đã được xác định với các biến chứng bất lợi đáng kể ở một số cá nhân. HTLV-1 và -2 có thể được phân biệt với nhau bằng phương pháp Western blot hoặc xét nghiệm axit nucleic. Nhiễm trùng *Strongyloides stercoralis* bị ảnh hưởng bởi nhiễm trùng đồng thời với HTLV-1; bệnh strongyloidiasis lan tỏa và hội chứng tăng nhiễm thường được quan sát thấy hơn ở bệnh nhân đồng nhiễm HTLV-1 21. Điều trị kháng Strongyloides cũng dường như kém hiệu quả hơn trong trường hợp đồng nhiễm HTLV-1. (Xem “Nhiễm trùng ở người nhận ghép tạng tạng đặc”, phần ‘Vi-rút HIV, HTLV và viêm gan’.)

Có hai xét nghiệm hiện có được sử dụng để sàng lọc nhiễm lao tiềm ẩn (LTBI): xét nghiệm da lao (TST) tuberculin skin test và xét nghiệm giải phóng interferon-gamma (IGRA). Cả hai xét nghiệm đều kém nhạy hơn ở những người bị suy giảm miễn dịch. Tần suất IGRA không xác định cao nhất ở những người dự định ghép gan. IGRA thường dương tính hơn TST ở những người dự định ghép thận và có mối liên hệ lớn hơn với các yếu tố nguy cơ mắc TB 28-31. Giá trị tiên đoán trong ghép tạng cần được nghiên cứu thêm.

Những thay đổi trên phim X-quang ngực cũng có thể gợi ý về việc tiếp xúc trước đó với TB.

Các chỉ định phòng ngừa bao gồm:

Bệnh nhân đã hoàn thành liệu trình điều trị đầy đủ cho TB không cần phòng ngừa lặp lại trừ khi họ sau đó có một trong hai chỉ định cuối cùng kể trên. Điều trị lao tiềm ẩn nên được bắt đầu trước khi ghép tạng nhưng không cần trì hoãn việc ghép tạng.

Việc sàng lọc và điều trị lao tiềm ẩn ở những người dự định và người nhận ghép tạng đặc được thảo luận chi tiết ở nơi khác. (Xem “Lao ở người dự định và người nhận ghép tạng đặc”.)

Việc loại bỏ hoàn toàn nhiễm trùng thường không khả thi đối với phổi bị quần thể hóa, áp xe gan hoặc rò mật. Nhiễm trùng phải được kiểm soát ở mức độ có thể trước phẫu thuật ghép tạng. Việc tiến hành ghép tạng trong bối cảnh nhiễm trùng đang hoạt động đòi hỏi phải xem xét kỹ lưỡng các rủi ro và lợi ích của việc ghép tạng. Trước, hoặc tại thời điểm “kích hoạt” ứng viên trong danh sách chờ ghép tạng, tình trạng của bất kỳ nhiễm trùng đang hoạt động hoặc nhiễm trùng trong quá khứ liên quan nào phải được ghi lại, bao gồm cả kế hoạch tái tạo bằng lấy mẫu can thiệp để đảm bảo dẫn lưu dịch nhiễm trùng hoặc cấy mẫu hô hấp lặp lại.

Như đã lưu ý ở trên, những bệnh nhân có khuynh hướng giải phẫu mắc nhiễm trùng, chẳng hạn như viêm túi mật, viêm túi thừa hoặc hít sặc tái phát (ở người nhận ghép phổi), có thể được hưởng lợi từ phẫu thuật phòng ngừa trước khi ghép tạng. Những bệnh nhân có tiền sử viêm xoang tái phát nên được đánh giá trước khi ghép tạng về nhiễm trùng xoang bằng chụp cắt lớp vi tính và bởi bác sĩ tai mũi họng, người có thể lấy mẫu cấy từ mô sâu và/hoặc thực hiện thủ thuật dẫn lưu nếu cần. Một ví dụ bổ sung, những bệnh nhân bị nhiễm Clostridioides difficile tái phát có thể được hưởng lợi từ ghép phân trước khi ghép cơ quan rắn 32,33.

Bất cứ khi nào có thể, tất cả các ống thông tĩnh mạch hoặc tiết niệu nên được loại bỏ trước khi ghép tạng. Các ngoại lệ bao gồm ống thông lọc máu hoặc phúc mạc ở bệnh nhân không nhiễm khuẩn huyết và bơm bóng động mạch chủ hoặc thiết bị hỗ trợ tâm thất nội mạch. Những thứ này nên được loại bỏ, nếu có thể, tại thời điểm ghép tạng. Ở bệnh nhân suy gan chờ ghép tạng, có thể thực hiện đặt nội khí quản chọn lọc để ngăn ngừa hít sặc. Cấy mẫu đờm cơ bản nên được lấy (để ghi nhận các sinh vật quần thể hóa) và các nhiễm trùng đang hoạt động được điều trị khi có thể. Dự phòng kháng sinh chống viêm phúc mạc do vi khuẩn tự phát, thường bằng một tác nhân fluoroquinolone, có thể hữu ích ở bệnh nhân có cổ trướng sau khi ghi nhận các mẫu cấy âm tính 1,2. (Xem “Viêm phúc mạc do vi khuẩn tự phát ở người lớn: Quản lý”.)

Các phương pháp xét nghiệm COVID-19 được thảo luận riêng. (Xem “COVID-19: Chẩn đoán”, phần ‘Phương pháp chẩn đoán’.)

Nhìn chung, 24 giờ hoặc ít hơn với cephalosporin thế hệ thứ nhất cung cấp sự bảo vệ đầy đủ cho ghép thận khi không có dữ liệu vi sinh học cụ thể yêu cầu phạm vi bao phủ rộng hơn. Trong ghép gan, việc bao phủ thường được áp dụng cho hệ vi khuẩn đường mật và đường ruột bao gồm enterococci và các vi sinh vật kỵ khí, thường là bổ sung cho phòng ngừa nấm dựa trên dịch tễ học tại địa phương. Cần xem xét phòng ngừa nấm quanh phẫu thuật bằng các tác nhân azole hoặc echinocandin đối với bệnh nhân có các yếu tố nguy cơ cụ thể, bao gồm những người cần vòng Roux-en-Y, phẫu thuật lại, hoặc liệu pháp thay thế thận, hoặc đối với người nhận ghép tuyến tụy dựa trên tỷ lệ nhiễm trùng candida cao hơn ở những vật chủ này. Nhiều trung tâm có tỷ lệ nhiễm trùng đáng kể do Aspergillus sau ghép gan hoặc phổi sử dụng phòng ngừa quanh phẫu thuật bằng amphoterysin B dạng lipid, sản phẩm amphoterysin hô hấp (đối với người nhận ghép phổi), hoặc azole thế hệ sau (voriconazole, posaconazole, isavuconazole). Các thuốc kháng nấm azole có ảnh hưởng đáng kể đến quá trình chuyển hóa của các chất ức chế calcineurin và sirolimus; cần điều chỉnh liều lượng trong và sau các liệu pháp này 37. Thời gian phòng ngừa có thể được điều chỉnh dựa trên các phát hiện và nuôi cấy trong mổ.

Các khuyến nghị chi tiết hơn về việc sử dụng phòng ngừa quanh phẫu thuật được trình bày riêng. (Xem “Phòng ngừa nhiễm trùng trong ghép cơ quan rắn”, phần ‘Phòng ngừa tiền ghép’.)

1. Fishman JA. Infection in Organ Transplantation. Am J Transplant 2017; 17:856.
2. Fishman JA. Infection in solid-organ transplant recipients. N Engl J Med 2007; 357:2601.
3. Malinis M, Boucher HW, AST Infectious Diseases Community of Practice. Screening of donor and candidate prior to solid organ transplantation-Guidelines from the American Society of Transplantation Infectious Diseases Community of Practice. Clin Transplant 2019; 33:e13548.
4. Avery RK. Recipient screening prior to solid-organ transplantation. Clin Infect Dis 2002; 35:1513.
5. Roberts MB, Fishman JA. Immunosuppressive Agents and Infectious Risk in Transplantation: Managing the "Net State of Immunosuppression". Clin Infect Dis 2021; 73:e1302.
6. Mularoni A, Bertani A, Vizzini G, et al. Outcome of Transplantation Using Organs From Donors Infected or Colonized With Carbapenem-Resistant Gram-Negative Bacteria. Am J Transplant 2015; 15:2674.
7. Anesi JA, Blumberg EA, Han JH, et al. Impact of donor multidrug-resistant organisms on solid organ transplant recipient outcomes. Transpl Infect Dis 2022; 24:e13783.
8. Nellore A, Huprikar S, AST ID Community of Practice. Vancomycin-resistant Enterococcus in solid organ transplant recipients: Guidelines from the American Society of Transplantation Infectious Diseases Community of Practice. Clin Transplant 2019; 33:e13549.
9. Hand J, Patel G. Multidrug-resistant organisms in liver transplant: Mitigating risk and managing infections. Liver Transpl 2016; 22:1143.
10. Aguado JM, Silva JT, Fernández-Ruiz M, et al. Management of multidrug resistant Gram-negative bacilli infections in solid organ transplant recipients: SET/GESITRA-SEIMC/REIPI recommendations. Transplant Rev (Orlando) 2018; 32:36.
11. Fischer SA, Lu K, AST Infectious Diseases Community of Practice. Screening of donor and recipient in solid organ transplantation. Am J Transplant 2013; 13 Suppl 4:9.
12. Oliveira RA, Silva LS, Carvalho VP, et al. Visceral leishmaniasis after renal transplantation: report of 4 cases in northeastern Brazil. Transpl Infect Dis 2008; 10:364.
13. Smith DJ, Free RJ, Thompson GR 3rd, et al. Clinical Testing Guidance for Coccidioidomycosis, Histoplasmosis, and Blastomycosis in Patients With Community-Acquired Pneumonia for Primary and Urgent Care Providers. Clin Infect Dis 2024; 78:1559.
14. Ashraf N, Kubat RC, Poplin V, et al. Re-drawing the Maps for Endemic Mycoses. Mycopathologia 2020; 185:843.
15. Smith DJ, Williams SL, Endemic Mycoses State Partners Group, et al. Surveillance for Coccidioidomycosis, Histoplasmosis, and Blastomycosis – United States, 2019. MMWR Surveill Summ 2022; 71:1.
16. Clemente WT, Pierrotti LC, Abdala E, et al. Recommendations for Management of Endemic Diseases and Travel Medicine in Solid-Organ Transplant Recipients and Donors: Latin America. Transplantation 2018; 102:193.
17. Danziger-Isakov L, Kumar D, AST ID Community of Practice. Vaccination of solid organ transplant candidates and recipients: Guidelines from the American society of transplantation infectious diseases community of practice. Clin Transplant 2019; 33:e13563.
18. Ettenger R, Chin H, Kesler K, et al. Relationship Among Viremia/Viral Infection, Alloimmunity, and Nutritional Parameters in the First Year After Pediatric Kidney Transplantation. Am J Transplant 2017; 17:1549.
19. Roxby AC, Gottlieb GS, Limaye AP. Strongyloidiasis in transplant patients. Clin Infect Dis 2009; 49:1411.
20. Guidance for HTLV-1 screening and confirmation in potential donors and reporting potential HTLV-1 infection. https://optn.transplant.hrsa.gov/professionals/by-topic/guidance/guidance-for-htlv-1-screening-and-confirmation-in-potential-donors-and-reporting-potential-htlv-1-infection/ (Accessed on October 18, 2023).
21. Ye L, Taylor GP, Rosadas C. Human T-Cell Lymphotropic Virus Type 1 and Strongyloides stercoralis Co-infection: A Systematic Review and Meta-Analysis. Front Med (Lausanne) 2022; 9:832430.
22. Muñoz P, Rodríguez C, Bouza E. Mycobacterium tuberculosis infection in recipients of solid organ transplants. Clin Infect Dis 2005; 40:581.
23. Aguado JM, Torre-Cisneros J, Fortún J, et al. Tuberculosis in solid-organ transplant recipients: consensus statement of the group for the study of infection in transplant recipients (GESITRA) of the Spanish Society of Infectious Diseases and Clinical Microbiology. Clin Infect Dis 2009; 48:1276.
24. Manuel O, Humar A, Preiksaitis J, et al. Comparison of quantiferon-TB gold with tuberculin skin test for detecting latent tuberculosis infection prior to liver transplantation. Am J Transplant 2007; 7:2797.
25. Bumbacea D, Arend SM, Eyuboglu F, et al. The risk of tuberculosis in transplant candidates and recipients: a TBNET consensus statement. Eur Respir J 2012; 40:990.
26. Epstein DJ, Subramanian AK. Prevention and Management of Tuberculosis in Solid Organ Transplant Recipients. Infect Dis Clin North Am 2018; 32:703.
27. Subramanian AK, Theodoropoulos NM, Infectious Diseases Community of Practice of the American Society of Transplantation. Mycobacterium tuberculosis infections in solid organ transplantation: Guidelines from the infectious diseases community of practice of the American Society of Transplantation. Clin Transplant 2019; 33:e13513.
28. Kim SH, Lee SO, Park IA, et al. Diagnostic usefulness of a T cell-based assay for latent tuberculosis infection in kidney transplant candidates before transplantation. Transpl Infect Dis 2010; 12:113.
29. Mazurek GH, Jereb J, Vernon A, et al. Updated guidelines for using Interferon Gamma Release Assays to detect Mycobacterium tuberculosis infection – United States, 2010. MMWR Recomm Rep 2010; 59:1.
30. Rogerson TE, Chen S, Kok J, et al. Tests for latent tuberculosis in people with ESRD: a systematic review. Am J Kidney Dis 2013; 61:33.
31. Theodoropoulos N, Lanternier F, Rassiwala J, et al. Use of the QuantiFERON-TB Gold interferon-gamma release assay for screening transplant candidates: a single-center retrospective study. Transpl Infect Dis 2012; 14:1.
32. Paudel S, Zacharioudakis IM, Zervou FN, et al. Prevalence of Clostridium difficile infection among solid organ transplant recipients: a meta-analysis of published studies. PLoS One 2015; 10:e0124483.
33. Friedman-Moraco RJ, Mehta AK, Lyon GM, Kraft CS. Fecal microbiota transplantation for refractory Clostridium difficile colitis in solid organ transplant recipients. Am J Transplant 2014; 14:477.
34. American Society of Transplantation. 2019-nCoV (Coronavirus): FAQs for Organ Donation and Transplantation. https://www.myast.org/faqs-organ-transplantation (Accessed on October 18, 2023).
35. Guidance from the International Heart and Lung Transplantation regarding the SARS CoV-2 pandemic. https://ishlt.org/covid-19-information (Accessed on October 18, 2023).
36. Anesi JA, Blumberg EA, Abbo LM. Perioperative Antibiotic Prophylaxis to Prevent Surgical Site Infections in Solid Organ Transplantation. Transplantation 2018; 102:21.
37. Husain S, Sole A, Alexander BD, et al. The 2015 International Society for Heart and Lung Transplantation Guidelines for the management of fungal infections in mechanical circulatory support and cardiothoracic organ transplant recipients: Executive summary. J Heart Lung Transplant 2016; 35:261.